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        NK細胞采用因子體外培養的方法

        更新時間:2024-06-07      點擊次數:1242

        Nk細胞又稱自然殺傷細胞,是人體內抗癌活性較強的免疫細胞之一,它在骨髓中發育成熟后,主要存在于外周血、肝臟、腹膜腔和胎盤中,在遇到腫瘤病變細胞時就會把它們殺死,同時也會刺激身體產生抗腫瘤的免疫反應,所以被醫學界稱為“抗癌的第一道防線"。

        NK細胞主要分布于外周血,占外周血淋巴細胞總數的5-10%,無需抗原提呈細胞作為中介提呈抗原,也無需抗體幫助,可直接清除衰老細胞、變性細胞、癌細胞及病毒感染細胞等。
        NK細胞屬于白細胞的一種,它是人體忠誠的衛士,主要任務就是消滅那些已經被病毒感染的細胞,從而把病毒消滅在“搖籃"中。另外,身體里面的腫瘤細胞也是它們追殺的對象。
        NK細胞在機體免疫監視和早期抗感染免疫過程中起到非常重要的作用,是一種有效、安全的腫瘤生物免疫治療方法,具有廣闊的應用前景。
        分離培養NK細胞有多種方法,以下是采用某種試劑盒的因子法體外培養方法來培養NK細胞:

        這種方法采用自體外周血細胞中分離得到的單個核細胞,經體外操作使NK細胞擴增活化,通過激活體 內特異性免疫反應達到殺火腫瘤細胞目的的一種體細胞治療方法。

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        1.某NK細胞培養試劑盒包含:
        ①無血清培養基2瓶(l000mL/瓶):
        ②NK試劑A, 1支:
        ③NK試劑B, 1支:
        ④NK試劑C, 1支:
        ⑤NK試劑D, 1支:
        ⑥NK試劑E, 1支:
        培養體系中需用到2支(100萬IU/支)rH IL-2
        2.原材料
        1.采取外周血(可從臍血、骨髓等組織)
        2.需的試劑耗材包括:
        0.4%苔盼藍溶液、生理鹽水、人淋巴細胞分離液(建議選用GE)、175cm2培養瓶、GT-T610 (A)培養袋、15ral/50ml/250ml離心管、移液管、1毫升無菌注射器
        3.NK細胞培養時間過程:
        前一天:要提前處理好細胞活化瓶(NK試劑A)
        第1天:進行外周血單個核細胞分離與誘導(NK試劑B)
        第3天:NK細胞第一次補液,補液50ml(NK試劑C)
        第5天:NK細胞第二次補液,補液175ml (NK試劑D)
        第7天:NK細胞第三次補液,裝袋并補液500ml (NK試劑E)
        第9-10天:NK細胞第四次補液,分袋并補液750ml
        第12天:NK細胞第五次補液.補液500ml
        第13天:檢菌
        第14、15天:培養成功
        (細胞培養成功時間視具體細胞生長情況而定,在保持培培養基ph和細胞活力正常的情況下也可以多培養一天)
        4.具體操作步驟如下:
        1.頭一天一定要先處理細胞活化瓶。
        2.將NK試劑A (4度保存)加入到含有12.5ml生理鹽水的175cm2底面積細胞培養瓶中,充分的混勻 30秒-1分鐘,使液體充分在瓶底分散,4度冰箱平放過夜
        (NK試劑A需要和生理鹽水充分混勻平鋪在瓶底;次日取出后直接吸棄液體即可,無需清洗)
        3.外周血單個核細胞分離與誘導(第1天)
        4.以100ml外周血為例,如血量不同,也可按操作規程做相應調整。
        5.將患者外周血,用移液訝吸取少許原血(約300 ul)劃線或滴入平皿過行檢菌。然后,正常室溫下,進行離心。
        6.將上層血漿轉入離心,滅活,離心,取上清液備用。
        7.使用等體積的生理鹽水與血細胞沉淀混勻后,小心加到Ficoll層上,使分層保持清晰。室溫內進行離心。
        8.吸取外周血單個核細胞(PBMC)層,盡量吸盡兩液面交接處的細胞層.加生理鹽水吹打混勻,離 心。相同方法冉次洗滌細胞。
        9.棄去上清后,用無血清培養基重懸細胞,吸取少量細胞計數。
        10.按照細胞密度為1-2*10^6個/ml(優為5 *10^6個/ml),用培養基清洗離心管,并入培養瓶內,并加入1支NK試劑B,患者滅活血漿1.25ml (5%)確保培養基終體積為25ml左右。剩余血漿4°C 密封保存備用。
            注:包被瓶取出時間為細胞加入前5分鐘,其他時間需在4度放置備用。
            試劑A、B、C、D、E的取用.違議第一次吸取原液后.以適貴培養基沖洗西林瓶后再吸出,減少損耗

        11.活化培養基的配置:其中1瓶無血清培養基中,加入100萬IU的IL-2,終濃度為1000IU/mL。
              注:活化培養基每次使用前恢復至室溫。
        12.NK細胞的第一補液(第3天),補加含有5%的患者滅活血漿和NK試劑C,確保培養的終體積為 75mL。
        13.NK細胞的第二次補液(第5天),補加含有5%的患者滅活血漿和NK試劑D,確保培養的終體積為 250ml.
        14.NK細胞的第三次補液及其裝袋(第7天),細胞轉袋前將培養瓶底部的細胞進行輕微吹散細胞,隨后將培養瓶的中的細胞懸液及其500mL活化培養基,裝入到細胞培養袋中,同時加入1支NK試劑E,及其剩余的全部血漿,確保終體積為750ml。
        15.NK細胞的第四次補液(第9天),主要為分袋操作,將培養體系由750ml擴增至1500ml。
        16.NK細胞的第五次補液(第!2天).主要為補液操作,將剩余的500mL擴增液均分到2個培養袋中,確保每袋體積為1000ml。
        17.檢菌,細胞培養第13天,對細胞懸液進行檢菌、內毒素檢測。用5ml注射器分別從培養瓶和袋內抽取少最細胞懸液,加入正置的平皿中,放入35℃恒溫生化培養箱, 記錄放入日期及培養物品。隔夜后倒置,保留48小時。
        18.收獲,正常情況下,第13, 14天各收獲1000ml細胞懸液。若因臨床需要進行提前或延遲回輸,也可相應提前或延遲。(NK細胞建議2-4h之內使用,以保證其活性)


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